云南切片免疫組化可以做什么

來源: 發(fā)布時間:2021-10-27

實驗失敗常見問題分析有哪些:

為什么在顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn)所有的切片都成陰性?

答:這種現(xiàn)象主要是由操作不當(dāng)導(dǎo)致,可能的原因有:1.染色操作不當(dāng),致使染色失?。?.漏加一種抗體或者制備出的抗體沒有活性;3.緩沖液中有疊氮化鈉,抑制了酶的活性;4.復(fù)染或脫水劑使用不當(dāng)?shù)?。建議逐一排查,找到原因后重新進行實驗。

在顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn)所有的切片都成陽性,這是為什么?答:與上一個問題類似,出現(xiàn)的原因也是試驗操作存在問題,可能的原因有:1.切片在染色過程中抗體過濃,或者干片了;使用的呈色底物溶液已變色或呈色反應(yīng)時間過長;3.抗體溫育的時間過長等。

在顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn)切片的背景很深,這是為什么?答:以下幾方面會導(dǎo)致切片的背景過深:1.蛋白質(zhì)封閉不夠或所用血清溶血,造成抗體的非特異性反應(yīng);2.內(nèi)源性過氧化酶沒有完全阻斷,顯色過程中過氧化酶與酶底物反應(yīng),造成背景;3.底物呈色反應(yīng)時間過長或呈色反應(yīng)后漂洗不徹底。 免疫組化結(jié)果怎么看?云南切片免疫組化可以做什么

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免疫組化技術(shù)有哪些應(yīng)用?

定位和定性是免疫組化比較大的優(yōu)勢。相比于其他蛋白檢測方法,免疫組化具有定位較直接準(zhǔn)確、定性靈敏度高,是定位檢測分析優(yōu)先方法,尤其對于有些因子的轉(zhuǎn)位研究十分有用。免疫組織化學(xué)的臨床應(yīng)用主要包括以下幾方面:惡性**的診斷與鑒別定性;確定轉(zhuǎn)移性惡性**的原發(fā)部位;對某類**進行進一步的病理分型;軟組織**診斷;為臨床提供治療方案的選擇;近年來,隨著免疫組織化學(xué)技術(shù)的發(fā)展和各種特異性抗體的出現(xiàn),使許多疑難**得到了明確診斷。免疫組化在**診斷和鑒別診斷中的實用價值受到了普遍的認可,其在低分化或未分化**的鑒別診斷時,準(zhǔn)確率可達50%-75%。


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免疫組化中免疫膠體金技術(shù),英瀚斯生物小編為您說明介紹。免疫膠體金技術(shù)是以膠體金這樣一種特殊的金屬顆粒作為標(biāo)記物。膠體金是指金的水溶膠,它能迅速而穩(wěn)定地吸附蛋白,對蛋白的生物學(xué)活性則沒有明顯的影響。因此,用膠體金標(biāo)記一抗、二抗或其他能特異性結(jié)合免疫球蛋白的分子(如葡萄球菌A蛋白)等作為探針,就能對組織或細胞內(nèi)的抗原進行定性、定位,甚至定量研究。由于膠體金有不同大小的顆粒,且膠體金的電子密度高,所以免疫膠體金技術(shù)特別適合于免疫電鏡的單標(biāo)記或多標(biāo)記定位研究。由于膠體金本身呈淡至深紅色,因此也適合進行光鏡觀察。如應(yīng)用銀加強的免疫金銀法則更便于光鏡觀察。

免疫組化的抗原修復(fù)

很多抗原的可視性可以通過抗原修復(fù)來提高,抗原修復(fù)可以打破福爾馬林固定時形成的蛋白質(zhì)交聯(lián),從而使被掩藏的抗原顯現(xiàn)出來??乖迯?fù)技術(shù)包括不同時間長度的加熱或者利用蛋白酶來做酶消化,例如蛋白酶K,胰蛋白酶或胃蛋白酶。加熱的方法通常會用到微波爐,高壓鍋,蒸箱或水浴。將樣品在接近100°C高溫加熱20分鐘后再冷卻同等的時間。**常用的抗原修復(fù)液有a)檸檬酸鹽緩沖劑,pH6.0,b)Tris-EDTA,pH9.0和c)EDTA,pH8.0.如需要可用檸檬酸鹽緩沖劑做抗原修復(fù):檸檬酸鹽緩沖劑配方:10mM檸檬酸鈉,0.05%Tween-20,pH6.0或10mM檸檬酸,0.05%Tween-20,pH6.0將含有檸檬酸鈉或檸檬酸鹽緩沖劑的染色盤放到蒸箱或者水浴中,預(yù)熱到95-100°C。將切片浸沒于染色盤中。蓋子虛掩,孵育20-40分鐘(研究者需自己決定比較好的孵育時間)。關(guān)掉蒸箱或水浴,將染色盤置于室溫下,讓切片冷卻20分鐘。在TBS-Tween-20中漂洗切片2次,每次2分鐘。開始封閉步驟。 免疫組化樣本如何處理?

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免疫組化結(jié)果要如何分析?

 (1)陽性著色細胞計數(shù)法。在40*光鏡下,隨機選擇不重疊的10個視野,機器或人工計數(shù)陽性著色細胞,每組3~6張不同動物組織切片,然后進行組間比較即可。

(2)灰密度分析法??梢酝ㄟ^在不同組別和不同動物組織切片上選擇相同區(qū)域、相同條件下用image j進行灰密度分析,然后進行統(tǒng)計分析即可。

(3)評分法。用光學(xué)顯微鏡下對組織切片分別按染色程度(0~3分為陰性著色、淡黃色、淺褐色、深褐色)、陽性范圍進行評分(1~4分為0~25%、26~50%、51~75%、76~100%),**終可以分數(shù)相加,再進行比較。對于以上這幾種方法,各有利弊,請細心選擇。要想得到正確結(jié)果的前提是你要做出著色均勻、背景很淺的高質(zhì)量切片。


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細胞爬片免疫組化檢測實驗步驟

1、選擇貼壁良好的細胞爬片,用4%多聚甲醛固定后15min后自然晾干。

2、PBS洗3次,每次5min。3、切片放入3%過氧化氫溶液,室溫下孵育10min,以阻斷內(nèi)源性過氧化物酶。

4、PBS洗3次,每次5min,甩干后5%BSA封閉20min(封閉電荷)。

5、去除BSA液,每張切片加入50μl稀釋的一抗覆蓋組織,4℃過夜。

6、PBS洗3次,每次5min。


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7、去除PBS液,每張切片加50μl-100μl相應(yīng)種屬的二抗,4℃孵育50min。

8、PBS洗3次,每次5min。

9、去除PBS液,每張切片加50-100μl新鮮配制DAB溶液,顯微鏡控制顯色。

10、顯色完全后,蒸餾水或自來水沖洗,蘇木素復(fù)染,1%鹽酸酒精分化(1s),自來水沖洗,氨水返藍,流水沖洗。

11、切片經(jīng)過梯度酒精(70-100%)10min一個梯度,脫水干燥,二甲苯透明,中性樹膠封固。 云南切片免疫組化可以做什么

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