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來(lái)源: 發(fā)布時(shí)間:2021-12-30

PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的反向PCR介紹:反向PCR的目的在于擴(kuò)增一段已知序列旁側(cè)的DNA,也就是說(shuō)這一反應(yīng)體系不是在一對(duì)引物之間而是在引物外側(cè)合成DNA.反向PCR可用于研究與已知DNA區(qū)段相連接的未知染色體序列,因此又稱(chēng)為染色體步移。這時(shí)選擇的引物雖然與中心DNA兩末端序列互補(bǔ),但引物3’端是相互反向的。反向PCR的操作流程:擴(kuò)增前先用限制性?xún)?nèi)切酶酶切樣品DNA,然后用DNA連接酶連接成一個(gè)環(huán)狀分子,通過(guò)反向PCR擴(kuò)增引物的上游片段和下游片段。選擇多種限制性?xún)?nèi)切酶,基本準(zhǔn)則是選擇不能在非酶切位點(diǎn)切斷靶DNA的酶。裂解中心區(qū)的內(nèi)切酶使反向PCR只能擴(kuò)增引物所定模板(依賴(lài)于引物)的上游或下游區(qū),而不裂解中心區(qū)的酶則使兩側(cè)序列都擴(kuò)增Southern雜交來(lái)確定內(nèi)切酶用以產(chǎn)生大小適于環(huán)化及反向PCR的片段的末端片段大多數(shù)有核基因組含有大量中度和高度重復(fù)序列,所以往往需要兩組到三組嵌套引物有沒(méi)有推薦的pcr檢測(cè)外包公司?pcr是什么意思

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PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的巢氏PCR(NestedPCR)介紹:巢氏PCR需要兩到三對(duì)引物,一般采用較為套引物擴(kuò)增15-30個(gè)循環(huán),再用擴(kuò)增DNA的片段內(nèi)設(shè)定的第二套引物擴(kuò)增15-30個(gè)循環(huán),這樣可使待擴(kuò)增序列得到高效擴(kuò)增,而次級(jí)結(jié)構(gòu)卻很少擴(kuò)增。套式引物PCR減少了引物非特異性退火,從而增加了特異性擴(kuò)增,提高了擴(kuò)增效率。若將套失PCR的內(nèi)外引物稍加改變,延長(zhǎng)外引物長(zhǎng)度(25-30bp),同時(shí)縮短內(nèi)引物長(zhǎng)度(15-17bp),使外引物先在高退火溫度下復(fù)性,做雙溫?cái)U(kuò)增,然后改換至三溫循環(huán),使內(nèi)引物在外引物擴(kuò)增的基礎(chǔ)上,在低退火溫度復(fù)性,直到擴(kuò)增完成,這樣就可以使兩套引物一次同時(shí)加入。pcr是什么意思pcr檢測(cè)樣本的保存要求與方法?

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PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的免疫-PCR(immuno-PCR)介紹:免疫-PCR(immuno-PCR)是新近建立的一種靈敏、特異的抗原檢測(cè)系統(tǒng)。它利用抗原-抗體反應(yīng)的特異性和PCR擴(kuò)增反應(yīng)的極高靈敏性來(lái)檢測(cè)抗原,尤其適用于極微量抗原的檢測(cè)。免疫-PCR試驗(yàn)的主要步驟有三個(gè):①抗原-抗體反應(yīng),②與嵌合連接分子結(jié)合,③PCR擴(kuò)增嵌合連接分子中的DNA(一般為質(zhì)粒DNA)。該技術(shù)的關(guān)鍵環(huán)節(jié)是嵌合連接分子的制備。在免疫-PCR中,嵌合連接分子起著橋梁作用,它有兩個(gè)結(jié)合位點(diǎn),一個(gè)與抗原抗體復(fù)合物中的抗體結(jié)合,一個(gè)與質(zhì)粒DNA結(jié)合,其基本原理與ELISA和免疫酶染色相似,不同之處在于其中的標(biāo)記物不是酶而是質(zhì)粒DNA,在操作反應(yīng)中形成抗原抗體-連接分子-DNA復(fù)合物,通過(guò)PCR擴(kuò)增DNA來(lái)判斷是否存在特異性抗原。免疫PCR優(yōu)點(diǎn)為:①特異性較強(qiáng),因?yàn)樗⒃诳乖贵w特異性反應(yīng)的基礎(chǔ)上。②敏感度高,PCR具有驚人的擴(kuò)增能力,免疫PCR比ELISA敏感度高105倍以上,可用于單個(gè)抗原的檢測(cè)。③操作簡(jiǎn)便,PCR擴(kuò)增質(zhì)粒DNA比擴(kuò)增靶基因容易得多,一般實(shí)驗(yàn)室均能進(jìn)行。

PCR由變性--退火--延伸三個(gè)基本反應(yīng)步驟構(gòu)成:

1、模板DNA的變性:模板DNA經(jīng)加熱至93℃左右一定時(shí)間后,使模板DNA雙鏈或經(jīng)PCR擴(kuò)增形成的雙鏈DNA解離,使之成為單鏈,以便它與引物結(jié)合,為下輪反應(yīng)作準(zhǔn)備。

2、模板DNA與引物的退火(復(fù)性):模板DNA經(jīng)加熱變性成單鏈后,溫度降至55℃左右,引物與模板DNA單鏈的互補(bǔ)序列配對(duì)結(jié)合。3、引物的延伸:DNA模板--引物結(jié)合物在72℃、DNA聚合酶(如TaqDNA聚合酶)的作用下,以dNTP為反應(yīng)原料,靶序列為模板,按堿基互補(bǔ)配對(duì)與半保留復(fù)制原理,合成一條新的與模板DNA鏈互補(bǔ)的半保留復(fù)制鏈。重復(fù)循環(huán)變性--退火--延伸三過(guò)程就可獲得更多的“半保留復(fù)制鏈”,而且這種新鏈又可成為下次循環(huán)的模板。每完成一個(gè)循環(huán)需2~4分鐘,2~3小時(shí)就能將待擴(kuò)目的基因擴(kuò)增放大幾百萬(wàn)倍 英瀚斯生物pcr檢測(cè),提供原始數(shù)據(jù)和完整報(bào)告。

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PCR的假陽(yáng)性主要原因之一引物設(shè)計(jì)不合適:選擇的擴(kuò)增序列與非目的擴(kuò)增序列有同源性,因而在進(jìn)行PCR擴(kuò)增時(shí),擴(kuò)增出的PCR產(chǎn)物為非目的性的序列。靶序列太短或引物太短,容易出現(xiàn)假陽(yáng)性。需重新設(shè)計(jì)引物。靶序列或擴(kuò)增產(chǎn)物的交叉污染:這種污染有兩種原因:一是整個(gè)基因組或大片段的交叉污染,導(dǎo)致假陽(yáng)性。這種假陽(yáng)性可用以下方法解決:操作時(shí)應(yīng)小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣器內(nèi)或?yàn)R出離心管外。除酶及不能耐高溫的物質(zhì)外,所有試劑或器材均應(yīng)高壓消毒。所用離心管及樣進(jìn)器頭等均應(yīng)一次性使用。必要時(shí),在加標(biāo)本前,反應(yīng)管和試劑用紫外線照射,以破壞存在的核酸。二是空氣中的小片段核酸污染,這些小片段比靶序列短,但有一定的同源性??苫ハ嗥唇樱c引物互補(bǔ)后,可擴(kuò)增出PCR產(chǎn)物,而導(dǎo)致假陽(yáng)性的產(chǎn)生,可用巢式PCR方法來(lái)減輕或消除。pcr檢測(cè)的價(jià)格是多少?江西熒光定量pcr檢測(cè)

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PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的熱啟動(dòng)PCR介紹:熱啟動(dòng)PCR是除了好的引物設(shè)計(jì)之外,提高PCR特異性的重要的方法之一。盡管TaqDNA聚合酶的比較好延伸溫度在72℃,聚合酶在室溫仍然有活性。因此,在進(jìn)行PCR反應(yīng)配制過(guò)程中,以及在熱循環(huán)剛開(kāi)始,保溫溫度低于退火溫度時(shí)會(huì)產(chǎn)生非特異性的產(chǎn)物。這些非特異性產(chǎn)物一旦形成,就會(huì)被有效擴(kuò)增。在用于引物設(shè)計(jì)的位點(diǎn)因?yàn)檫z傳元件的定位而受限時(shí),如site-directed突變、表達(dá)克隆或用于DNA工程的遺傳元件的構(gòu)建和操作,熱啟動(dòng)PCR尤為有效。pcr是什么意思

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