濟(jì)南正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家供應(yīng)

來源: 發(fā)布時(shí)間:2024-07-11

轉(zhuǎn)染的注意事項(xiàng):細(xì)胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細(xì)胞密度根據(jù)不同的細(xì)胞類型或應(yīng)用而異。一般轉(zhuǎn)染時(shí),貼壁細(xì)胞密度為70%-90%,懸浮細(xì)胞密度為2×106-4×106細(xì)胞/ml時(shí)效果較好。確保轉(zhuǎn)染時(shí)細(xì)胞沒有長滿或處于靜止期。因?yàn)檗D(zhuǎn)染效率對(duì)細(xì)胞密度很敏感,所以在不同實(shí)驗(yàn)間保持一個(gè)基本的傳代步驟很重要。鋪板細(xì)胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細(xì)胞產(chǎn)量。在三種不同密度進(jìn)行細(xì)胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應(yīng)增加了。這些結(jié)果說明,對(duì)于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會(huì)因細(xì)胞密度而異~形成DNA脂復(fù)合物,也能被表面帶負(fù)電的細(xì)胞膜吸附。濟(jì)南正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家供應(yīng)

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細(xì)胞轉(zhuǎn)染的常用方法:細(xì)菌轉(zhuǎn)染:原理:對(duì)于用脂質(zhì)體不能實(shí)現(xiàn)轉(zhuǎn)染的細(xì)胞,可以采用細(xì)菌轉(zhuǎn)染??捎糜诘鞍踪|(zhì)過表達(dá)或克制,是臨床研究中較常用的方法。它通過侵染宿主細(xì)胞將外源基因整合到染色體中,可用于難轉(zhuǎn)染細(xì)胞、原代細(xì)胞的穩(wěn)定性轉(zhuǎn)染。實(shí)驗(yàn)步驟:通過基因克隆生成重組細(xì)菌→采用非細(xì)菌法轉(zhuǎn)染包裝細(xì)胞系,擴(kuò)增并分離得到重組細(xì)菌顆?!兓⒌味?xì)菌液→轉(zhuǎn)導(dǎo)目的細(xì)胞(含有細(xì)菌特異性的受體)→去除培養(yǎng)物中的細(xì)菌,并加入新鮮培養(yǎng)基→分析細(xì)胞瞬時(shí)基因表達(dá)或沉默情況。寧波重慶細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑細(xì)胞密度以及轉(zhuǎn)染的時(shí)間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素。

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如何有效提高細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)效率:1.選擇高效的轉(zhuǎn)染方法不同轉(zhuǎn)染試劑有不同的轉(zhuǎn)染方法,但大多大同小異。轉(zhuǎn)染時(shí)應(yīng)跟據(jù)具體轉(zhuǎn)染試劑推薦的方法,但也要注意,因不同實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)的細(xì)胞性質(zhì)不同,質(zhì)粒定量差異,操作手法上的差異等,其轉(zhuǎn)染效果可能不同,應(yīng)根據(jù)實(shí)驗(yàn)室的具體條件來確定較佳轉(zhuǎn)染條件。2.確保所構(gòu)建載體的質(zhì)量。轉(zhuǎn)染載體的構(gòu)建(細(xì)菌載體,質(zhì)粒DNA,RNA,PCR產(chǎn)物,寡核苷酸等)也影響轉(zhuǎn)染結(jié)果。細(xì)菌載體對(duì)特定宿主細(xì)胞傳染效率較高,但不同細(xì)菌載體有其特定的宿主,有的還要求特定的細(xì)胞周期,如逆轉(zhuǎn)錄細(xì)菌需侵染分裂期的宿主細(xì)胞,此外還需考慮一些安全問題(如基因污染)。除載體構(gòu)建外,載體的形態(tài)及大小對(duì)轉(zhuǎn)染效率也有不同的影響,如前面提到的超螺旋及線性DNA對(duì)瞬時(shí)和穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的影響。如果基因產(chǎn)物對(duì)細(xì)胞有毒性作用,轉(zhuǎn)染也很難進(jìn)行,因此選擇組成或可調(diào)控,強(qiáng)度合適的啟動(dòng)子也很重要,同時(shí)做空載體及其它基因的相同載體構(gòu)建的轉(zhuǎn)染正對(duì)照可排除毒性影響的干擾。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1.選擇傳代次數(shù)較低并處于對(duì)數(shù)生長期的細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染。對(duì)大多數(shù)細(xì)胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進(jìn)行轉(zhuǎn)染,48h后收集細(xì)胞進(jìn)行功能檢測。對(duì)于原代細(xì)胞,可用促有絲分裂刺激物進(jìn)行細(xì)胞活化。2.對(duì)于貼壁細(xì)胞,一般要求在轉(zhuǎn)染前一日,用胰酶處理為單細(xì)胞懸液,重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時(shí)換一次新鮮培養(yǎng)液。3.支原體污染會(huì)嚴(yán)重降低細(xì)胞轉(zhuǎn)染的效率,且支原體不會(huì)像細(xì)菌污染那么明顯,因而轉(zhuǎn)染前可用環(huán)丙沙星處理細(xì)胞以除去支原體。必須通過對(duì)藥物的抗性篩選進(jìn)行擴(kuò)增或通過表型變化進(jìn)行鑒定。

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細(xì)胞電轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的幾點(diǎn)建議:1.電場強(qiáng)度要合適合適的電場強(qiáng)度對(duì)于電轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)非常重要,電場強(qiáng)度不能過高,過高會(huì)增加細(xì)胞的死亡率;也不能過低,過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細(xì)胞系具有不同的較佳場強(qiáng)值,實(shí)驗(yàn)前應(yīng)測定所轉(zhuǎn)染細(xì)胞系的較佳電場強(qiáng)度。2.細(xì)胞狀態(tài)要好用于電轉(zhuǎn)的細(xì)胞一般選取處于對(duì)數(shù)生長期的細(xì)胞(15代以內(nèi),傳代后2d)。因?yàn)樘幱趯?duì)數(shù)生長期的細(xì)胞分裂旺盛,表面結(jié)構(gòu)致密比穩(wěn)定期的細(xì)胞差,電轉(zhuǎn)后,細(xì)胞膜的恢復(fù)能力強(qiáng),而且處于有絲分裂期的細(xì)胞更容易接受外源DNA能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內(nèi)。唐山正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑銷售廠家

總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化。濟(jì)南正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家供應(yīng)

細(xì)胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1.選擇傳代次數(shù)較低并處于對(duì)數(shù)生長期的細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染。對(duì)大多數(shù)細(xì)胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當(dāng)天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進(jìn)行轉(zhuǎn)染,48h后收集細(xì)胞進(jìn)行功能檢測。對(duì)于原代細(xì)胞,可用促有絲分裂刺激物進(jìn)行細(xì)胞活化。2.對(duì)于貼壁細(xì)胞,一般要求在轉(zhuǎn)染前一日,用胰酶處理為單細(xì)胞懸液,重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時(shí)換一次新鮮培養(yǎng)液。3.支原體污染會(huì)嚴(yán)重降低細(xì)胞轉(zhuǎn)染的效率,且支原體不會(huì)像細(xì)菌污染那么明顯,因而轉(zhuǎn)染前可用環(huán)丙沙星處理細(xì)胞以除去支原體。4.細(xì)胞轉(zhuǎn)染時(shí)需要一定的細(xì)胞密度,以70-90%(貼壁細(xì)胞)或2×106-4×106細(xì)胞/ml(懸浮細(xì)胞)為宜。濟(jì)南正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑廠家供應(yīng)