成都外泌體提取試劑

來(lái)源: 發(fā)布時(shí)間:2023-05-05

外泌體的提取方法學(xué)規(guī)范、統(tǒng)一定量及鑒定等。關(guān)于外泌體的提取有超速離心、試劑盒、超濾法、蔗糖密度梯度離心等,然而各種方法均有其利弊。超速離心法是目前外泌體相關(guān)文章中的主流方法,由于離心步驟繁瑣,費(fèi)事費(fèi)力,而且步驟多導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)中容易污染,且損耗量大,使得較終回收的外泌體不穩(wěn)定。而且對(duì)于抽提細(xì)胞上清來(lái)說(shuō),更是極為不請(qǐng)便,試想用提取300ml的上清需要6個(gè)50ml離心管,無(wú)論是過(guò)濾還是后續(xù)的每一步的離心去沉淀,都具有操作極其不便的缺點(diǎn),總之非常麻煩。而超濾法存在外泌體會(huì)堵塞膜孔,造成濃縮效率低,濃縮管重復(fù)利用差,甚至堵塞在膜孔的外泌體還可能會(huì)粘連成團(tuán),造成損失及較后的數(shù)據(jù)有誤差,對(duì)于后續(xù)實(shí)驗(yàn)也有影響。外泌體提純?cè)噭┖械奶厣c優(yōu)勢(shì):無(wú)需蛋白酶處理。成都外泌體提取試劑

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外泌體的提取主要包括以下幾種方式:一是超速離心法,這是目前外泌體提取較常用的方法。此種方法得到的外泌體量多,但是純度不足,電鏡鑒定時(shí)發(fā)現(xiàn)外泌體聚集成塊,由于微泡和外泌體沒(méi)有非常統(tǒng)一的鑒定標(biāo)準(zhǔn),也有一些研究認(rèn)為此種方法得到的是微泡不是外泌體。二是過(guò)濾離心,這種操作簡(jiǎn)單、省時(shí),不影響外泌體的生物活性,但同樣存在純度不足的問(wèn)題。三是密度梯度離心法,用此種方法分離到的外泌體純度高,但是前期準(zhǔn)備工作繁雜,耗時(shí),量少。四是免疫磁珠法,這種方法可以保證外泌體形態(tài)的完整,特異性高、操作簡(jiǎn)單、不需要昂貴的儀器設(shè)備,但是非中性pH和非生理性鹽濃度會(huì)影響外泌體生物活性,不便進(jìn)行下一步的實(shí)驗(yàn)。五是PS親和法,該方法將PS(磷脂酰絲氨酸)與磁珠結(jié)合,利用親和原理捕獲外泌體囊泡外的PS。該方法與免疫磁珠法相似,獲得的外泌體形態(tài)完整,純度較高。由于不使用變性劑,不影響外泌體的生物活性,外泌體可用于細(xì)胞共培養(yǎng)和體內(nèi)注射。2016.9《ScientificReports》雜志發(fā)表了該方法較新數(shù)據(jù),表明PS法可提取相當(dāng)高純度的外泌體。六是色譜法,這種方法分離到的外泌體在電鏡下大小均一,但是需要特殊的設(shè)備,應(yīng)用不普遍。太原正規(guī)外泌體提取試劑報(bào)價(jià)外泌體的提取方法:超速離心法(差速離心)。

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外泌體:已經(jīng)有研究報(bào)道了各種Hh的胞外轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制,但實(shí)際用于體內(nèi)Hh分泌和轉(zhuǎn)運(yùn)的途徑尚不清楚。該研究顯示Hh在果蠅翅膀成蟲(chóng)盤(pán)的分泌依賴于運(yùn)輸所需的內(nèi)體分選復(fù)合物(ESCRT)。在體內(nèi),產(chǎn)生Hh的細(xì)胞中ESCRT活性的降低導(dǎo)致外部細(xì)胞表面保留Hh。此外,產(chǎn)生Hh的細(xì)胞中的ESCRT活性對(duì)于長(zhǎng)距離信號(hào)傳導(dǎo)是必需的。證據(jù)表明Hh和ESCRT蛋白質(zhì)的庫(kù)在體內(nèi)一起分泌到細(xì)胞外空間中,并且隨后可以在受體細(xì)胞的表面一起被檢測(cè)到。這些發(fā)現(xiàn)揭示了ESCRT蛋白質(zhì)在控制形態(tài)發(fā)生活性中的新功能,揭示了一種新的機(jī)制,通過(guò)細(xì)胞外囊泡在組織中轉(zhuǎn)運(yùn)分泌的Hh,這是長(zhǎng)距離靶向誘導(dǎo)所必需的。

用于外泌體提取的體液收集注意事項(xiàng):1、選擇血清還是血漿?推薦大多數(shù)研究選擇血漿。血液凝固過(guò)程中血小板會(huì)產(chǎn)生大量外泌體,含量占血清中外泌體的50%以上,選擇血漿可避免不必要的影響。2、注意抗凝劑的選擇。肝素類抗凝劑與PCR假陰性有關(guān),這可能是因?yàn)楦嗡嘏c引物和/或酶有競(jìng)爭(zhēng)作用。除了克制PCR,肝素可以與外泌體結(jié)合,阻止細(xì)胞攝取外泌體。因此需要記錄肝素類藥物的患者的血液樣本。EDTA和雙嘧達(dá)莫(CTAD),CTAD可以阻止血小板的并克制其釋放外泌體。EDTA可能會(huì)干擾PCR反應(yīng)(盡管其程度小于肝素),但是還是優(yōu)于其他選擇。此外,有研究表明鈣螯合劑可在體外促進(jìn)外泌體與血小板的結(jié)合從而降低經(jīng)EDTA、或檸檬酸鹽處理后的血液樣本中外泌體的表觀數(shù)量。使用肝素時(shí)這種影響就不會(huì)發(fā)生,因此建議在測(cè)量外泌體的精確數(shù)量時(shí)選用肝素。但是也有研究表明肝素可以導(dǎo)致體外條件下外泌體的減少??傊?,目前尚需要更多的研究論證抗凝劑是否及如何對(duì)外泌體的釋放,作用和下游反應(yīng)產(chǎn)生特異性影響。來(lái)源于細(xì)胞內(nèi)溶酶體微粒內(nèi)陷形成的多囊泡體,經(jīng)多囊泡體外膜與細(xì)胞膜融合后釋放到胞外基質(zhì)中。

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研究初次發(fā)現(xiàn)瘧原蟲(chóng)傳染小鼠血漿外泌體(exosomes)能夠壓制一些病癥血管生成,并初步闡明其分子機(jī)制。研究加深了對(duì)瘧原蟲(chóng)傳染宿主所分泌的外泌體與一些病癥血管生成之間的相互作用的認(rèn)識(shí),為開(kāi)發(fā)瘧原蟲(chóng)傳染來(lái)源的外泌體作為一種新型抗一些病癥制劑奠定了基礎(chǔ)。研究人員選用肺病小鼠模型作為研究對(duì)象,從傳染瘧原蟲(chóng)的小鼠血漿中獲得外泌體,并將這些外泌體注射到小鼠的一些病癥內(nèi)部,并與沒(méi)有瘧原蟲(chóng)傳染的小鼠血漿外泌體進(jìn)行對(duì)照。研究發(fā)現(xiàn),瘧原蟲(chóng)傳染小鼠的血漿外泌體明顯壓制一些病癥血管的生成。進(jìn)一步的研究發(fā)現(xiàn),瘧原蟲(chóng)傳染的小鼠血漿外泌體通過(guò)至少四種特殊的微小RNA(miR16-5p/17-5p/322-5p/497-5p)壓制血管內(nèi)皮細(xì)胞VEGF受體(VEGFR2)的表達(dá)從而阻斷血管生成的信號(hào)通路。這些發(fā)現(xiàn)加深了人們對(duì)瘧原蟲(chóng)抗病機(jī)理的理解,并為瘧原蟲(chóng)療法治病一些疾病的臨床研究提供進(jìn)一步的理論依據(jù)。外泌體的提取分離:超濾離心。太原外泌體提取試劑直銷價(jià)

通過(guò)密度梯度離心,樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。成都外泌體提取試劑

外泌體的提取、分離方法:梯度密度離心法。研究發(fā)現(xiàn),外泌體的密度在1.1~1.19kg·L-1之間,因此,可以采用密度梯度離心法來(lái)分離外泌體。該方法是將超速離心結(jié)合蔗糖密度梯度或蔗糖墊結(jié)合,原理是先除去非囊泡物質(zhì),再通過(guò)梯度密度濃縮提取外泌體,該方法可以得到相對(duì)較為純凈的外泌體。傳統(tǒng)的梯度密度方法通常需要離心16h,但是2012年,研究者[15]使用了62~90h才分離出某些確切囊泡,因此,該方法可能不足以沉淀所有的外泌體。如果離心時(shí)間不充足,污染物質(zhì)可能和外泌體保持在相同的密度層,特別是這個(gè)密度范圍又比較寬。成都外泌體提取試劑

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